BD Mycoslide Mode d'emploi

MODE D'EMPLOI –
MILIEUX SUR LAMES
IMMERGEES PRETS A
L'EMPLOI
DA-273157.00
Rev.: Juin 2003
BD BBL Mycoslide
APPLICATION
La BBL Mycoslide est une lame immergée à trois faces contenant des milieux destinés à la
détection de champignons, notamment des levures, à partir d’échantillons d'urine,
d’expectorations, de lavages de gorge, de selles, ainsi que divers autres échantillons prélevés
par écouvillonnage.
PRINCIPES ET EXPLICATION DE LA METHODE
Méthode microbiologique.
Les champignons filamenteux et les levures sont des pathogènes courants, responsables de
nombreux types d’infections locales et systémiques chez les individus immunocompétents et
immunocompromis.1 L’un des pathogènes fongiques les plus fréquents est Candida albicans.
Chez les patients immunocompromis, il n'est par rare que C. albicans et C. dubliniensis, soient
les agents responsables d'infections localisées et systémiques. Les trois principaux sites
anatomiques impliqués dans les cas d'infections locales sont les voies respiratoires, l’appareil
génito-urinaire et le tube digestif. Une détermination quantitative des levures isolées à partir de
ces sites anatomiques est importante car, si elles sont susceptibles d'être présentes en petites
quantités dans la flore normale, leur population augmente de manière significative en cas
d’infection.1-5
La BBL Mycoslide est un support de gélose à trois faces, recouvert par deux milieux
fongiques, et par un troisième milieu, destiné à la détection des bactéries éventuellement
présentes au sein de l’échantillon. L'intégralité du support de gélose est plongé dans des
échantillons liquides, ou ensemencé par striation avec des échantillons prélevés par
écouvillonnage. Après l’incubation, les isolats peuvent être dénombrés puis utilisés pour des
tests de différenciation et d’identification supplémentaires, et pour réaliser des tests de
sensibilité.
Le milieu 1, Malt agar, permet la détection de tous les types de champignons, notamment les
moisissures et les levures. L’extrait de malt contient toutes les substances nutritives nécessaires
à la croissance des champignons. Le faible pH du milieu entraîne une inhibition partielle à
complète des bactéries contaminantes, mais est bien toléré par les champignons. Ce milieu est
utilisé pour la détermination quantitative des pathogènes fongiques.
Le milieu 2 est une Malt Agar complémentée en cycloheximide, un inhibiteur des moisissures
saprophytes et de certaines levures. La plupart des champignons pathogènes, notamment
Candida albicans, ne sont pas inhibés dans ce milieu. Cependant, Cryptococcus neoformans et
certaines Candida spp, autres que C. albicans, qui peuvent également servir d’agents infectieux,
sont inhibés par le cycloheximide.
Le milieu 3 est une CLED (Cystine-Lactose-Electrolyte-Deficient) Agar, milieu de culture
différentiel servant à l’isolement et à l’énumération des bactéries à partir d'échantillons d'urine. Il
peut également être utilisé pour l’isolement de bactéries à partir d’autres échantillons, si ces
bactéries sont modérément exigeantes. Sur la BBL Mycoslide, le milieu est principalement
utilisé pour déterminer la flore bactérienne associée.
La BBL Mycoslide est utilisée pour la détection, l’isolement et le dénombrement de
champignons à partir de divers sites anatomiques et types d’échantillons. Elle peut également
être utilisée comme milieu de transport, pour acheminer les échantillons à partir du cabinet
médical jusqu'au laboratoires d’analyse.
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REACTIFS
Formules* par litre d'eau purifiée
BBL Mycoslide
Milieu 1 : Malt Agar
Extrait de malt
30,0 g
Gélose
pH 4,1 ± 0,2
15,0
Milieu 2 : Malt Agar avec
cycloheximide
Extrait de malt
30,0 g
Milieu 3 : CLED Agar
Peptone de gélatine
4,0 g
Peptone de caséine
Extrait de bœuf
Lactose
L-cystine
Bleu de
bromothymol
Gélose
pH 7,3 ± 0,3
*Ajustées et/ou complémentées en fonction des critères de performances imposés.
4,0
3,0
10,0
0,128
0,02
Gélose
Cycloheximide
pH 4,1 ± 0,2
15,0
1,0
15,0
PRECAUTIONS
. A usage professionnel uniquement.
Ne pas utiliser de lames présentant des signes de contamination microbienne, décoloration,
dessiccation ou fissure, ou d’autres signes de détérioration.
Respecter les techniques d’asepsie et les mesures de protection contre les risques biologiques
tout au long de la procédure. Consulter le document MODE D'EMPLOI GENERAL pour plus
d'informations sur les procédures de manipulation aseptique, les risques biologiques et
l'élimination des produits usagés.
Lors de l’utilisation de BBL Mycoslide en tant que milieu de transport entre un cabinet médical
et un laboratoire de diagnostic, respecter la réglementation locale en vigueur concernant
l’acheminement des échantillons infectieux.
STOCKAGE ET DUREE DE CONSERVATION
Dès réception, conserver les produits BBL Mycoslide dans l’obscurité entre 15 et 20 °C, dans
leur emballage d’origine, jusqu’au moment de leur utilisation. Ne pas les congeler, les
surchauffer, les laisser se dessécher, ni les soumettre à des variations de température.
Les lames peuvent être ensemencées jusqu'à la date de péremption indiquée (voir l'étiquette de
l'emballage), et incubées pendant les durées recommandées.
Les lames non ouvertes provenant de boîtes déjà entamées peuvent être utilisées jusqu’à la
date de péremption indiquée, dans la mesure où elles sont conservées dans un lieu propre
entre 15 et 20 °C. Une fois ouvertes, les lames doivent être utilisées immédiatement.
CONTROLE DE QUALITE PAR L'UTILISATEUR
Préparer des suspensions des souches mentionnées ci-dessous, jusqu’à obtenir une turbidité
équivalente à un standard McFarland 0,5. Pour chaque microorganisme, verser 20 à 25 mL de
sérum physiologique à l'intérieur d'un tube (de diamètre suffisamment large pour accueillir un
support de gélose BBL Mycoslide), puis ajouter 1 mL de la suspension de la souche préparée
comme décrit ci-dessus. Ouvrir une BBL Mycoslide, retirer le support de gélose, le plonger
brièvement à l'intérieur de la suspension de la souche de test, et procéder conformément aux
méthodes décrites dans la rubrique Mode opératoire du test. Incuber pendant 2 à 5 jours à 35
± 2 °C. Examiner les surfaces de la gélose comme décrit sous Résultats et interprétation afin
de rechercher une croissance éventuelle.
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Souches
Candida albicans
ATCC 10231
Aspergillus niger
ATCC 16404
E. coli
ATCC 25922
Pseudomonas aeruginosa
ATCC 27853
Enterococcus faecalis
ATCC 29212
Staphylococcus aureus
ATCC 25923
Sans ensemencement
Milieu 1
Malt Agar
Milieu 2
Malt Agar avec
cycloheximide
Croissance
Croissance
Croissance
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Couleur légèrement
ambrée
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Inhibition partielle à
complète
Couleur légèrement ambrée
Milieu 3
CLED Agar
Croissance
Croissance
Croissance
Croissance
Croissance
Croissance
Jauneverdâtre
METHODE
Matériaux fournis
BBL Mycoslide. Produits contrôlés microbiologiquement.
Matériaux non fournis
Milieux de culture auxiliaires, réactifs et matériel de laboratoire requis.
Types d'échantillons
La BBL Mycoslide convient pour l’isolement et l’énumération de champignons à partir
d'échantillons d’urine (provenant du jet urinaire principal ou d’un cathéter, ou prélevés lors d’une
ponction vésicale sus-pubienne), d’expectorations, de lavages de gorge, de selles, et de
nombreux autres échantillons (p. ex. écouvillons vaginaux). A ne pas utiliser pour détecter
des infections bactériennes.
Prélèvement et préparation des échantillons
Respecter les techniques d’asepsie lors du prélèvement des échantillons. Utiliser les méthodes
standard de prélèvement.1,6
L’urine doit être fraîche ou ne pas être âgée de plus de 2 h. Ou alors, les échantillons d'urine
peuvent être conservés au réfrigérateur (24 h au maximum) afin d’empêcher une croissance
excessive des agents infectieux ou des contaminants avant l’ensemencement.
Expectorations : Ajouter une partie d'expectorations fraîches, spontanées ou provoquées, à une
partie d’une solution de trypsine diluée à 0,25 % et agiter pendant 45 min à 37 °C avec des
billes de verre stériles. Ou alors, homogénéiser l’expectoration dans un Stomacher pendant
1 min. Si la quantité d’expectorations disponible est faible, elle peut être utilisée sans
prétraitement.
Lavages de gorge : Centrifuger le liquide pendant 10 min à 2 000 x g. Jeter la phase liquide,
placer le sédiment dans 5 mL de solution de trypsine (0,25 %), ou dans du sérum physiologique,
et agiter avec des billes de verre stériles pendant 15 min à 37 °C.
Echantillons fécaux, frais ou conservés en réfrigération depuis 48 h au maximum.
Homogénéiser 1 g de matière fécale dans 100 mL de solution de trypsine diluée à 0,25 %
contenant des billes de verre stériles, pendant 15 min à 37 °C.
Ecouvillons : Prélever l’échantillon (p. ex. dans la gorge ou le vagin) à l'aide d'un écouvillon et
appliquer directement, sans prétraitement, comme décrit ci-dessous. Si un délai est prévisible
entre l'instant où le prélèvement est effectué et son ensemencement, il faut placer l’écouvillon
dans un milieu de transport approprié.1,6
Mode opératoire du test
1. Inspecter visuellement les surfaces de la gélose, sans ouvrir le tube contenant la BBL
Mycoslide. Eliminer les lames présentant une contraction des milieux ou une contamination.
2. Etiqueter le tube avec le nom du patient, le numéro de l’échantillon et la date de
l’ensemencement.
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3. Dévisser le bouchon et retirer la lame du tube plastique, en prenant soin de ne pas toucher
les surfaces de la gélose.
Ensemencement avec des échantillons liquides (p. ex. urine ou lavages de gorge) :
1. Plonger brièvement la lame à trois reprises dans les échantillons liquides (p. ex. urine ou
expectorations prétraitées, lavages de gorge, etc.), pour que les couches de gélose soient
complètement ensemencées par le liquide. Veiller à ne pas laisser la lame plus de 10 sec
dans le liquide, car les composants du milieu risquent de se diluer et/ou le gel risque de se
désolidariser de son support plastique.
2. Si seul un petit volume d’échantillon est disponible, utiliser une pipette ou une seringue
stérile pour le recueillir, et rincer complètement les trois milieux.
3. Maintenir le bout de la lame contre le rebord interne du tube afin de permettre à l’excédent
de liquide de s’égoutter.
4. Il est possible d’éliminer les dernières gouttes présentes sur l’extrémité de la lame à l’aide
d’un mouchoir en papier. Replacer délicatement la lame à l’intérieur du tube en plastique et
bien le reboucher.
5. Incuber la lame pendant 48 h à 30 ± 2 °C ou la transmettre après ensemencement à un
laboratoire spécialisé. La croissance des champignons filamenteux nécessite parfois une
incubation plus longue, notamment en cas d’infections des voies respiratoires inférieures.
Ensemencement avec des échantillons sur écouvillons :
Strier délicatement les trois milieux de culture de la lame avec l’écouvillon.
Résultats et interprétation
Après l’incubation, retirer délicatement la lame du tube afin de lire les résultats. Respecter les
techniques d’asepsie tout au long de la procédure d’inspection. Le port de gants chirurgicaux
pendant l’inspection est recommandé. Ne pas toucher les surfaces de la gélose !
Milieu 1 (Malt Agar) :
Ce milieu permet de déterminer le nombre total de colonies, pour tous les champignons. Les
champignons filamenteux produisent généralement des colonies présentant une surface
rugueuse (mycélium aérien). Les colonies sont souvent pigmentées (noires, grises, bleu-vert,
jaunes et autres). Les différentes espèces de levures produisent des colonies blanches à
crèmes, d’aspect brillant à mat, qui présentent généralement une surface lisse, et dont l'aspect
s'apparente aux colonies bactériennes. Des tests supplémentaires sont nécessaires pour une
identification complète des pathogènes.1.
Pour une détermination quantitative, comparer la croissance effective obtenue sur la lame avec
les photographies de référence fournies dans le Guide d’interprétation, situé à la fin de ce
document. En présence d’une croissance importante et d’un nombre élevé de colonies
(supérieur à 105), les surfaces de la gélose peuvent apparaître complètement recouvertes par
un « tapis » de croissance agglomérée.
Se reporter au tableau et aux références pour interpréter la signification clinique des
dénombrements de pathogènes dans les échantillons issus de divers sites anatomiques:1-5
Type d’échantillon
Urine provenant du jet urinaire principal
ou d'un cathéter
Urine prélevée par ponction vésicale suspubienne
Expectorations
Lavages de gorge
Selles
Echantillons vaginaux
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Nombre de colonies de levures
Normal1)
Significatif au
Incertain2)
plan clinique
>105/mL
104 – 105/mL
≤103/mL
Toute apparition de champignons est significative du point
de vue clinique
>105/mL
104 – 105/mL
≤103/mL
3
4
2
>104
10 – 10
≤10
4
5
>105/g 3)
10 – 10 /g
≤103/g
Toute apparition de champignons est significative du point
de vue clinique
-4-
Note au bas de la table :
1)
Des dénombrements faibles peuvent être significatifs chez les patients prétraités ou chez ceux atteints
d'infections chroniques.
2)
Réévaluer si possible.
3)
La thérapeutique mise en place pour les patients dont les selles présentent des dénombrements
importants de levures, doit être soigneusement évaluée. Il n'est pas rare d'obtenir des populations de
levures importantes dans les selles de patients prétraités avec des antimicrobiens antibactériens. En
principe, le compte des levures revient à un niveau normal dès la thérapie antimicrobienne achevée. Chez
les patients immunocompromis, même une énumération faible peut révéler une infection.1,3
Milieu 2 (Malt Agar avec cycloheximide) : Ce milieu permet d'éliminer les champignons
filamenteux sensibles au cycloheximide (p.ex. les moisissures comme l’Aspergillus). Certaines
levures sont également inhibées par cet additif. La résistance au cycloheximide est une
caractéristique importante pour la différenciation des champignons :
Microorganismes1)
Résistants au
cycloheximide
Candida albicans
Signification clinique et
fréquence
Pathogène important ; fréquent
Souvent détecté chez les patients
infectés par le VIH
Rare, faible
C. guilliermondii
C. kefyr (=C. pseudotropicalis)C. kefyr Rare, faible
(=C. pseudotropicalis)
Rare
Other speciesAutres espèces
sensible au cycloheximide Candida tropicalis
Rare, faible
Relativement fréquent, pathogène
C. krusei
connu
Rare, pathogène connu
C. parapsilosis
Relativement fréquent, pathogène
Candida (Torulopsis) glabrata
connu
Rare ; pathogène important
Cryptococcus neoformans
Aspergillus, Penicillium, et autres
Aspergillus peut provoquer une
champignons
infection des voies respiratoires
inférieures ou d’autres infections.
Ces champignons peuvent aussi
être présents en tant que
contaminants.
1)
Noter que la croissance ou l’inhibition observée dans ce milieu ne se limite pas aux espèces
répertoriées dans ce tableau. Les microorganismes mentionnés sont fréquemment présents dans les
échantillons cliniques. Pour plus d’informations, consulter les documents cités en référence.1,7
C. dubliniensis
Le milieu 3 (CLED Agar) est utilisé pour la détermination quantitative du nombre de bactéries
présentes dans l’échantillon. Ces chiffres peuvent être importants car ils permettent d'évaluer la
relation entre la croissance bactérienne et la croissance fongique, notamment dans les selles.
Noter que des tests supplémentaires, tels que des procédures biochimiques et/ou
microscopiques, sont nécessaires pour obtenir une identification complète des pathogènes
isolés sur cette lame immergée.1 La plupart de ces méthodes sont uniquement applicables en
laboratoire de diagnostic et ne peuvent pas être réalisées dans un cabinet médical standard. Par
conséquent, toutes les lames immergées présentant des résultats nettement positifs ou
indéterminés doivent être transmises à un laboratoire d’analyse à même d’exécuter les tests
mycologiques.
Après utilisation, autoclaver ou incinérer tous les tubes usagés et tout autre matériel contaminé,
avant de les éliminer. Pour plus d’informations, voir le document MODE D’EMPLOI GENERAL.
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CARACTERISTIQUES DE PERFORMANCES ET LIMITES DE LA PROCEDURE
La BBL Mycoslide est utilisée pour la détection, l’isolement et l'énumération de champignons,
notamment des levures, à partir d'échantillons d’urine, d’expectorations, de lavages de gorge, de
selles et de nombreux autres. Les milieux contenus sur cette lame immergée sont des milieux
standard couramment utilisés pour l’isolement des groupes bactériens et fongiques
correspondants.1, 8-10
Quelquefois, la croissance des bactéries observée dans les milieux de culture fongique
(milieux 1 et 2) de cette lame immergée n’est pas totalement inhibée. En cas de doute, il
convient d'effectuer une coloration de Gram ou au bleu de méthylène sur les colonies
suspectes.
La plupart des espèces bactériennes moins exigeantes se développent dans le milieu 3 (CLED
Agar). Toutefois, ce milieu ne favorise pas la croissance de microorganismes tels que les
Neisseria spp. pathogènes, Haemophilus.spp. et d’autres. Les streptocoques bêta-hémolytiques
se développent difficilement dans ce milieu. Par conséquent, une gélose au sang ou au chocolat
doit être inclue, lorsqu'une infection bactérienne liée à ces microorganismes est présumée. Sur
la BBL Mycoslide, la CLED Agar sert principalement à déterminer la flore bactérienne
associée. Pour établir un diagnostic exact des infections bactériennes, l'utilisation d'autres
systèmes et milieux est recommandée. Les systèmes BBL Urotube doivent être utilisés pour
diagnostiquer des infections bactériennes à partir d’échantillons d’urine. Le traitement des
échantillons issus d'autres sites anatomiques et destinés à la détection des infections
bactériennes, doit être effectué dans des boîtes de Pétri contenant des milieux adaptés à la
nature des échantillons.
Le nombre d’espèces susceptibles de se développer dans les milieux fournis avec cette lame
immergée est important et ne se limite pas à celles mentionnées dans la rubrique Résultats et
interprétation. Seuls des laboratoires d'analyse sont en mesure de garantir une identification
exacte de nombreux microorganismes. Par conséquent, les lames doivent être expédiées dans
des structures de ce type, dès l’ensemencement ou après un ensemencement suivi d'une
période d’incubation.
La BBL Mycoslide convient à l’isolement primaire et au dénombrement. Pour réaliser des tests
supplémentaires, en particulier si des cultures mixtes sont observées dans les milieux de ce
système, repiquer dans des milieux d’étalement appropriés, afin d’obtenir des cultures pures,
indispensables à l'identification complète et à la réalisation de tests de sensibilité.1
Les lames immergées ne doivent pas être utilisées pour effectuer des tests de sensibilité sur
disque.
REFERENCES
1. Fromtling, R.A. (section editor). 2003. Mycology. In: Murray, P. R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M.
A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed. American Society for
Microbiology, Washington, D.C.
2. Halle, E., et al. 2000. Genitalinfektionen Teil I und II. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S. Gatermann
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Urban & Fischer, Munich, Germany.
3. Kist, M., et al. 2000. Infektionen des Darmes. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S. Gatermann (eds.):
MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik, vol. 9. Urban & Fischer,
Munich, Germany.
4. Podbielski, A., et al. 2000. Infektionen des Mundes und der oberen Atemwege. In: Mauch, H. and R.
Lüttiken (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik, vol.13.
Urban & Fischer, Munich, Germany.
5. Mauch, H., et al. 2003. Infektionen der tiefen Atemwege Teil II. In: Mauch, H., Lüttiken, R., and S.
Gatermann (eds.): MiQ - Qualitätsstandards in der mikrobiologisch-infektiologischen Diagnostik, vol.
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6. Sutton, D.A. 2003. Specimen collection, transport, and processing: mycology. In: Murray, P. R., E. J.
Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical microbiology, 8th ed.
American Society for Microbiology, Washington, D.C.
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DA-273157.00
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9. Larone, D.H. 1995: Medically important fungi - a guide to identification. 3rd edition. ASM Press,
Washington.
10. Atlas, R.M. 1993. Handbook of Microbiological media. CRC Press, Boca Raton, FL.
CONDITIONNEMENT
BBL Mycoslide
No réf. 273157
10 lames
INFORMATIONS COMPLEMENTAIRES
Pour plus d’informations, contacter le représentant local de BD.
BD Diagnostic Systems
Tullastrasse 8 – 12
D-69126 Heidelberg/Germany
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Reception_Germany@europe.bd.com
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http://www.bd.com
BD, BD logo and BBL are trademarks of Becton, Dickinson and Company.
Urotube and Mycoslide are trademarks of Becton Dickinson GmbH.
ATCC is a trademark of the American Type Culture Collection.
 2003 Becton, Dickinson and Company
GUIDE D’ INTERPRETATION (Malt Agar, milieu 1)
Pour la détermination quantitative du dénombrement cellulaire (voir la rubrique Résultats et
interprétation pour les dénombrements significatifs sur le plan clinique)
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